Аннотация |
В статье приведены данные о влиянии метаболического ацидоза на структур-
ную организацию селезенки. Модель метаболического ацидоза создавали на кошках
в/в введением 3-процентного раствора лактата в бедренную вену, происходило из-
менение рН 7,25–6,5 продолжительностью от 15 до 180 мин. В селезенке возникали
неспецифические изменения: отек, деструкция капсулы, подкапсулярных трабекул,
аргирофильного каркаса, делимфатизация паренхимы, которые зависят от глубины
и продолжительности ацидоза. В сосудах микроциркуляторного русла при рН 7,2
выявлялись сладжи эритроцитов и агрегаты тромбоцитов, происходила дегрануля-
ция тучных клеток, сдвиг рН до 7,0–6,8 сопровождался образованием внутрисосу-
дистых тромбов, нарушением целостности мембран эндотелиоцитов, появлением в
микроциркуляторном русле разрушенных органоидов эндотелиальных клеток. По-
добные изменения, по нашему мнению, приводят к развитию иммунодефицитных
состояний при ацидозе.
|
Список литературы |
1. Барта И. Селезенка: анатомия, физиология, патология и клиника. Будапешт, 1976. 264 с.
2. Журкова Е. М., Воробьёва Н. Ф. Морфофункциональные изменения селезенки крыс после
капсациновой блокады перефирических афферентных нейронов // Морфология. 1998. № 6. С. 44–46.
3. Краснова М. И., Пинегин Б. В. Лимфоидные образования слизистых оболочек: принципы
топической иммунизации // Иммунология. 2003. № 6. С. 359–364.
4. Сапин М. Р., Никитюк Д. Б. Иммунная система, стресс и иммунодефицит. М.: Джангар,
2000. 184 с.
5. Фёдоров Г. Н., Леонов С. Д. Роль селезенки в поддержании гомеостаза организма. М.,
2006. 218 с.
6. Becker-Herman S., Lantner F., Shachar I. Id2 negatively regulates В cell differentiation in the
spleen // J Immunol. 2002. Vol. 168. № 1. P. 5507–5513.
7. Herzer U., Crocoll A., Barton D. et al. The Wilms tumor suppressor gene wt1 is required for
development of the spleen // Curr. Biol. 1999. № 9. Р. 837–840.
8. Bachmann M. F., Wong B.R., Josien R. et al. TRANCE, a tumor necrosis factor family member
critical for CD40 ligand-independent T helper cell activation // J. Exp. Med. 1999. Vol. 189. Р. 1025–
1031.
9. Khaldoyanidi S., Sikora L., Broide D. H., Rothenberg M. E., Sriramarao P. Constitutive overexpression
of IL-5 induces extramedullar hematopoiesis in the spleen // Blood. 2003. Vol. 101. № 3.
P. 863–868.
10. Lu J., Chang P., Richardson J. A., Gan L., Weiler H., Olson E.N. The basic helix-loop-helix transcription
factor capsulin controls spleen organogenesis // Proc Natl Acad Sci USA. 2000. Vol. 97. № 17.
P. 9525–9530.
11. Mebius R. E., Kraal G. Structure and function of the spleen // Nat. Rev. Immunol. 2005. №5.
P. 606–616.
12. Ojiri Y., Noguchi K., Shiroma N., Matsuzaki Т., Sakanashi M., Sakanashi M. Uneven changes
in circulating blood cell counts with adrenergic stimulation to the canine spleen // Clin Exp Pharmacol
Physiol. 2002. Vol. 29. № 1. P. 53–59.
13. Saxena R. K., Adler W. H. In vitro erythrocidal activity of activated spleen cells from young and
old mice. // Exp Gerontol. 2000. Vol. 35. № 3. P. 409–416.
14. Wardemann H., Boehm ���������������������������������������������������������������������������.��������������������������������������������������������������������������, Dear N., Carsetti R. B-la ��������������������������������������������� ��������������������������������������������cells that link the innate and adaptive immune
responses are lacking in the absence of the spleen // J Exp Med. 2002. Vol. 195. P. 771–780.
15. Zhang C. H., He Y. L., Zhan W. H., Song W., Chen C. Q., Cai S. R., Huang M. J. Impact of spleen
preservation on the outcome of radical resection for cardia cancer // Zhonghua Wei Chang Wai Ke Za Zhi.
2007. Vol. 10. № 6. P. 531–534. |